2026年05月07日 17:14:47 来源:上海科器仪器设备有限公司 >> 进入该公司展台 阅读量:8
Blood, 2013, 10.1182/blood-2013-02-478925

(一)实验材料和实验方法
1)细胞: HMEC-1 (Centers for Disease Control and Prevention, Atlanta, GA) 104 per well
2)培养基: MCDB 131 Medium (Life Technologies)
3)基质胶: Matrigel (ECMatrix, Millipore) 10 µl per well
4)耗材: µ-Slide Angiogenesis, ibiTreat (ibidi, 81506) 1 Slide
5)其他: 细格纸 1 sheet
实验流程图:

实验流程图,提前将Matrigel融化,铺于ibidi血管生成载玻片 µSlide Angiogenesis 的下孔中,待胶凝后,将细胞悬液加入血管生成载玻片上孔中,成管后使用显微镜观察。
(二)实验步骤
1)准备基质胶
① 实验前**将Matrigel置于冰盒中,放入4。C冰箱,使胶能过夜缓慢融化。(注意:同样要准备一些4。C预冷的枪头用于吸取Matrigel)
② 开始实验前,将Matrigel始终保持放在冰盒中。
③ 打开**包装,取出ibidi血光生成载玻片 µ-Slide Angiogenesis。
④ 每孔中加入10μl Matrigel。注意枪头要垂直于内孔的正上方加入Matrigel,防止有Matrigel流经上孔而留下残留胶。

怎么知道加了合适体积的Matrigel:
由于Matrigel流动性不强,并且有可能移液枪不准确,有可能10μl的胶不能填满ibidi血管生成载玻片的下孔,这样,必然会影响到实验的成像结果。这时用一张格子纸就能知道移液枪调整到多少能正好把下孔填满。

如上图所示,垂直透过每个孔看下面的格子纸,如果格子被缩小了,那么就说明胶没加满,格子被放大了,那么胶就加多了,格子没发生什么变形,这才是刚刚加满下孔的状态。
2)凝胶
① 盖上ibidi血管生成载玻片的盖子。
② 准备一个10cm的培养皿,放入浸过水的纸巾,制成一个湿盒。
③ 将ibidi血管生成载玻片放入培养皿中,盖上培养皿盖。
④ 将整个培养皿放入培养箱中,静置30分钟左右,等待胶凝结。
⑤ 等待同时准备细胞悬液。

3)铺细胞
加入细胞的量直接影响实验结果,所以在正式实验开始之前,要对不同类型的细胞和使用数量进行预实验。获得*佳比例的细胞密度。使用HMEC-1细胞,每孔种10000个细胞即可。
① 准备密度为2*105cells/ml的细胞悬液,充分混匀。
② 将胶已经凝固的ibidi血管生成载玻片从湿盒中取出。
③ 每孔加入50μl的细胞悬液,注意保持枪头垂直在上孔的上方,不要接触下孔的凝胶。可以使用排枪。
④ 同样用格子纸查看是不是加了足够量的液体,如果没有,加入无细胞的培养基,使上孔液体正好加满。
⑤ 盖上盖,静置,一段时间后,所有细胞都会沉下去落在Matrigel的表面。

4)不同培养基处理
采用无处理基础培养基(basal,-),培养了HMEC-124小时后收集的培养基(cond,comp.)和在基础培养基中加入了分离出来的外分泌体的培养基(basal,+)分别加入血管生成载玻片中,37℃,培养18小时。
5)采集图像并统计结果
可以按照细胞的生长速度定时采集图像,并且对其成管长度测量和记录,并且对其进行统计分析。
三)实验结果

结果可见,18小时后,分别测量3组实验结果的血管长度,统计后发现,加入外分泌体的基础培养基和培养HMEC-1细胞24小时后收集的培养基的成管长度,显著长于纯的基础培养基中的HMEC-1细胞的成管长度。说明,外分泌体对血管生成有着显著的促进作用。