微分干涉相衬显微镜（DIC显微镜 differential interference contrast microscope）的物理原理不同于相差显微镜，技术设计要复杂得多。DIC利用的是偏振光，透射式DIC显微镜有四个特殊的光学组件：偏振器（polarizer）、DIC棱镜、DIC滑行器和检偏器（analyzer）。偏振器直接装在聚光系统的前面，使光线发生线性偏振。在聚光器中则安装了石英Nomarski棱镜，即DIC棱镜，此棱镜可将一束光分解成偏振方向不同的两束光（x和y），二者成一小夹角。聚光器将两束光调整成与显微镜光轴平行的方向。最初两束光相位一致，在穿过标本相邻的区域后，由于标本的厚度和折射率不同，引起了两束光发生了光程差。在物镜的后焦面处安装了第二个Nomarski棱镜，即DIC滑行器，它把两束光波合并成一束。这时两束光的偏振面（x和y）仍然存在。最后光束穿过第二个偏振装置，即检偏器。在光束形成目镜DIC影像之前，检偏器与偏光器的方向成直角。检偏器将两束垂直的光波组合成具有相同偏振面的两束光，从而使二者发生干涉。x和y波的光程差决定着透光的多少。光程差值为0时，没有光穿过检偏器；光程差值等于波长一半时，穿过的光达到值。于是在灰色的背景上，标本结构呈现出亮暗差。为了使影像的反差达到状态，可通过调节DIC滑行器的纵行微调来改变光程差，光程差可改变影像的亮度。调节DIC滑行器可使标本的细微结构呈现出正或负的投影形象，通常是一侧亮，而另一侧暗，这便造成了标本的人为三维立体感，类似大理石上的浮雕，如下图。
DIC显微镜下的硅藻（伪彩色）
DIC显微镜使细胞的结构，特别是一些较大的细胞器，如核、线粒体等，立体感特别强，适合于显微操作。目前像基因注入、核移植、转基因等的显微操作常在这种显微镜下进行。
落射式的DIC显微镜则只需要三个特殊的光学组件：偏振器（polarizer）、DIC棱镜和检偏器（analyzer），其光学原理如图所示：
由图可知：由光源发出的光波经起偏器后经半透半反镜入射至Nomarski偏振棱镜，棱镜将其分成两束具有微小夹角、振动方向相互垂直且振幅相等的线偏振光，通过筒长无限显微物镜后，产生剪切量为△x（略小于显微镜分辨率）的平行光入射到放置在载物台上的被测表面，从被测表面反射的两束正交偏振光各自经原路返回，由棱镜重新复合共线，经检偏器后成像在像面上。由于被剪切的光束产生的分离量略小于显微镜的分辩极限，因而在视场中看不到干涉条纹，通过将被测样品的位相变化转化为光强的变化，可看到具有立体感的浮雕成像。
DIC显微镜广泛应用于生物医学、材料科学等领域。
微分干涉相衬观察法 (DIC) 显微镜检查是明场显微镜检查的明智之选，利用这种的技术手段可以观察到未染色的试样，而这些试样在明场中成像较弱。
利用偏振光观察浮雕样成像
未染色试样通常并不显眼，在明场显微镜检查中几乎看不到试样的细节。但实际上，这些试样会与穿过它们的光源发生作用，并产生相移，而这些现象肉眼是看不见的。染色会导致振幅偏移，且穿过的光线强度会存在差异，但绝大多数情况下，无生命的试样才会发生上述现象。DIC 显微镜检查是一种利用光程长度的梯度差和相移，令相位物体在光学显微镜下清晰可见的技术手段。用户可以利用这种方式，通过适当的相衬度和分辨率来观察活细胞和有机体。
DIC 显微镜产生的图像为浮雕状，看起来有投影。这些图像没有光晕现象，相对其他显微镜而言，由于具备光学切片功能，即使较厚的试样也依然能够成像。
在 DIC 显微镜检查中，只有偏振光可用于试样照明。上述偏振光通过偏光正交平面，被色散成两条不同的光射线。这两条光射线彼此非常接近。由于这两条光射线在试样中会发生折射或散射，因此，会产生不同的相移。如果这些光射线重新聚合，它们会互相干涉。光线此时为椭圆偏光。该偏光将通过检偏镜转变成振幅移位。通过这种方式，令高达 1/200 波长（使用照相机时，甚至达 1/1000 波长）之间波长差的相位移动，以及整个波长都清晰可见。
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